Mobiele menu

Photon detection equipment for real time non-invasive in vivo bioluminescent imaging

Projectomschrijving

Bij dierstudies is het vaak belangrijk te weten hoe (tumor)cellen, virussen, bacteriën of vetdeeltjes zich verspreiden in het proefdier of juist weer verdwijnen. Traditioneel zijn daarvoor grote aantallen proefdieren nodig. Een alternatief is het bij proefdieren inbrengen van cellen of micro-organismen met het gen voor luciferase, afkomstig van vuurvliegjes. Die cellen zenden dan licht uit dat met een gevoelige camera kan worden waargenomen. Met deze techniek van fotodetectie van bioluminescentie kan bijvoorbeeld het effect van chemotherapie op kankercellen of de toediening van stamcellen uitstekend worden onderzocht in levende muizen. De onderzoekers hebben de methode onder meer toegepast met stamcellen van het bloedsysteem, het testen van ‘zelfmoord genen’ bij stamceltherapie, tissue engineering van bot, virale vectoren en een interventie bij artritis.

Producten

Titel: In vivo bioluminescence imaging study to monitor ectopic bone formation by luciferase gene marked mesenchymal stem cells Olivo C, Alblas J, Verweij V, Van Zonneveld AJ, Dhert WJ, Martens AC.
Auteur: Olivo C, Alblas J, Verweij V, Van Zonneveld AJ, Dhert WJ, Martens AC.
Magazine: Journal of Orthopedic Research
Titel: Validation of bioluminescence imaging of colorectal liver metastases in the mouse.
Auteur: Smakman N, Martens A, Kranenburg O, Borel Rinkes IH.
Titel: Immunosuppression promotes reovirus therapy of colorectal liver metastases. Smakman N, van der Bilt JD, van den Wollenberg DJ, Hoeben RC, Borel Rinkes IH,Kranenburg O.
Auteur: Smakman N, van der Bilt JD, van den Wollenberg DJ, Hoeben RC, Borel Rinkes IH,Kranenburg O
Magazine: Cancer Gene Therapy
Titel: An in vivo bioluminescence imaging study to monitor ectopic bone formation by luciferase gene marked mesenchymal stem cells.
Auteur: Olivo C, Alblas J, van Zonneveld AJ, Dhert WA and Martens ACM.
Titel: Cyclooxygenase-2 is a target of KRASD12, which facilitates the outgrowth of murine C26 colorectal liver metastases. Smakman N, Kranenburg O, Vogten JM, Bloemendaal AL, van Diest P, Borel Rinkes IH.
Magazine: Clinical Cancer Research
Titel: Immunosuppression promotes reovirus therapy of colorectal liver metastases.
Auteur: Smakman N, van der Bilt JD, van den Wollenberg DJ, Hoeben RC, Borel Rinkes IH, Kranenburg O.
Titel: Dual effect of Kras(D12) knockdown on tumorigenesis: increased immune-mediated tumor clearance and abrogation of tumor malignancy. Smakman N, Veenendaal LM, van Diest P, Bos R, Offringa R, Borel Rinkes IH, Kranenburg O
Auteur: Smakman N, Veenendaal LM, van Diest P, Bos R, Offringa R, Borel Rinkes IH, Kranenburg O
Magazine: Oncogene
Titel: Cyclooxygenase-2 is a target of KRASD12, which facilitates the outgrowth of murine C26 colorectal liver metastases.
Auteur: Smakman N, Kranenburg O, Vogten JM, Bloemendaal AL, van Diest P, Borel Rinkes IH.
Titel: Validation of bioluminescence imaging of colorectal liver metastases in the mouse. Smakman N, Martens A, Kranenburg O, Borel Rinkes IH.
Auteur: Smakman N, Martens A, Kranenburg O, Borel Rinkes IH.
Magazine: Journal of Surgical Research
Titel: Immunosuppression promotes reovirus therapy of colorectal liver metastases. Smakman N, van der Bilt JD, van den Wollenberg DJ, Hoeben RC, Borel Rinkes IH,Kranenburg O.
Auteur: Smakman N, van der Bilt JD, van den Wollenberg DJ, Hoeben RC, Borel Rinkes IH,Kranenburg O.
Magazine: Annals of Surgical Oncology
Titel: A bioluminescence imaging based in vivo model for preclinical testing of novel cellular immunotherapy strategies to improve Graft versus Myeloma.
Auteur: Rozemuller H, van der Spek E, Bogers-Boer LH, Zwart MC, Verweij V, Emmelot ME, Groen RW Spaapen R, Bloem AC, Lokhorst HM, Mutis T, Martens AC
Magazine: Haematologica
Titel: NS-398, a selective cyclooxygenase-2 inhibitor, reduces experimental bladder carcinoma outgrowth by inhibiting tumor cell proliferation. Smakman N, Schaap N, Snijckers CM, Borel Rinkes IH, Kranenburg O.
Magazine: Urology

Verslagen


Eindverslag

Doelstelling:
Wanneer in diermodelstudies de uitgroei van normale - of tumorcellen, virussen, liposomen of bacteriën moet worden bestudeerd is het van groot belang om te kunnen waarnemen hoe deze cellen c.q. micro-organismen zich in het proefdier verdelen, hoe ze vervolgens uitgroeien dan wel verdwijnen en hoe ze bijvoorbeeld reageren op een therapeutische interventie. Voorbeelden daarvan zijn de uitgroei van tumoren, het ontstaan en de lokalisatie van metastasen, maar ook het kunnen volgen van deze tumoren tijdens het toepassen van chemotherapie of cellulaire therapie. Dit kan echter ook de uitgroei van normale cellen na een stamceltransplantatie of de uitgroei van stamcellen bij botvorming betreffen. Maar het kan ook het waarnemen van de reactie van het immuunsysteem op een besmetting met micro-organismen betreffen of een immuunreactie tegen een tumor of zijn metastasen.

Vraag en taakstelling
Een standaardbenadering is het ontwikkelen van een diermodel dat een “reproduceerbare” groei van normale of tumorcellen vertoond, die wordt waargenomen door op bepaalde tijdstippen dieren uit het experiment nemen om vervolgens m.b.v. in vitro analyse de aantallen normale of tumorcellen dan wel micro-organismen worden gemeten. Hierbij is dus voorkennis nodig van de lokalisatie van het onderwerp van studie. Daarnaast zijn er grote aantallen dieren nodig om de noodzakelijke statische betrouwbaarheid te kunnen behalen. Bij dit project is voor een totaal andere benadering gekozen. Enkele jaren gelden is een nieuwe technologie ontwikkeld die het mogelijk maakt om cellen of micro-organismen genetisch te markeren door het inbrengen van het luciferse-gen dat afkomstig is van de vuurvlieg. In de cellen wordt hierdoor het luciferase eiwit geproduceerd. Als vervolgens luciferine wordt “aangeboden”, dan zal dit door het luciferase (enzym) producerende cellen worden omgezet. In aanwezigheid van zuurstof en ATP als energiebron, worden er fotonen vrijgemaakt. Deze kunnen gemeten worden m.b.v. een extreem gevoelige camera (cooled charge coupled device CCCD). Ook wanneer deze reactie in levende dieren verloopt kan met de CCCD hiervan een opname worden gemaakt door de dieren onder narcose 10-20 minuten te “belichten”. Behalve dat de plaats waar deze reaktie plaatsvindt kan eveneens de hoeveelheid geproduceerd licht nauwkeurig gekwantificeerd worden. Dit biedt de mogelijkheid tot vrij exacte lokalisatie van cellen c.q. micro-organismen alsmede de “grootte” van het target te bepalen. Doordat de dieren in het experiment op regelmatige tijdstippen onderzocht kunnen worden, kunnen de veranderingen (toename/afname) in geproduceerde (normale of tumor) cellen of micro-organismen worden waargenomen. De effectiviteit van een toegepaste chemo-of cellulaire therapie kan met deze technologie uitstekend worden onderzocht.

Bij het project “Photon detectie camera for real time non-invasive in vivo imaging”, zijn de volgende onderzoeken/onderzoeksgroepenbetrokken.
a] Genetische modificatie van hematopoietische stamcellen (afd Hematologie UMCU). b] Suicide gen therapie in de context van allogene stamceltransplantatie, (afd.Hematologie, UMCU); c] Tissue engineering van bot t.b.v. spinal fusion (Dept. of Orthopedics), d] Ontwikkeling van Corona virale vectoren (afd. Virologie Veterinaire Faculteit, UU); e] Anti-angiogenese bij de behandeling van solide tumoren (afd Medische Oncologie, UMCU); f] Mechanisme van T cel differentiatie en activatie (Dept. of Immunology, UMCU, GDL-UU); g] Interventie bij arthritis (Inst. of Infectious Diseases and Immunology, Veterinaire Faculteit, UU).

De doelstelling van het project was om te onderzoeken in hoeverre de “in vivo imaging” technologie ingezet zou kunnen worden bij de verschillende onderzoeken zoals dat door bovengenoemde onderzoeksgroepen van het UMC Utrecht wordt uitgevoerd.

Samenvatting van de aanvraag

Recent progress in the development of high resolution imaging techniques and reporter probes is expected to revolutionize molecular imaging research in animal models of human diseases. This bioluminescent imaging technology is based on the real-time imaging of cells/viruses/bacteria/naked DNA, marked with the firefly luciferase (Luc) gene, which emits light in the presence of oxygen and the substrate luciferin, that is transmitted through the animals tissues. This allows non-invasive and very sensitive (down to 1000 cells) monitoring of individual infused entities in small experimental animals. The possibilities and limitations of this technology are nicely illustrated in recent reports [refs. 1-9]. Major advantages of this system are 1) real time non-invasive monitoring of infused entities, 2) extremely high sensitivity, 3) the possibility to individually monitor differently marked cell types, 4) to study biological processes at regular time intervals from a very early onset, and 5) it is based on non-radioactive reagents.A central question in adoptive transfer of normal cells, tumor cells, viruses, liposomes, etc. into experimental animals concerns the kinetics and pattern of distribution of the infused entities, their subsequent survival and outgrowth and their response upon therapeutic intervention. Examples of such studies are the growth of solid tumors and metastasis formation, tumor targeting with (genetically manipulated) T lymphocytes, engraftment of hematopoietic stem cells, controlled expression of (therapeutic) genes to monitor disease development, ectopic tissue formation in tissue engineering, and viral or bacterial infections.Animal models of human disease to study these processes from their onset are rarely available. In general, one has to rely on models that typically use therapeutic endpoints of gross tumor/cell growth frequently encompassing animal death. Although the use of marker genes allows follow-up of the target cell population, it is inevitable to sacrifice animals at regular time intervals to perform the various techniques for marked cell detection (e.g. FACS, PCR, immune histopathology, array technology etc.). Monitoring normal and tumor cell growth, metastasis formation, cell-cell interactions, gene expression and response to therapeutic interventions, all require animal models of minimal disease states with low frequency of the cells of interest. At the UMC Utrecht and Utrecht University several groups will enormously benefit from possibilities to incorporate bioluminescent imaging to the armamentarium, each with their own specific research targets. This includes: a] Genetic modification of hematopoietic stem cells (Dept. of Hematology, UMCU); b] Suicide gene therapy in the context of allogeneic stem cell transplantation (Dept. of Hematology, UMCU); c] Tissue engineered bone for spinal fusion (Dept. of Orthopedics, UMCU), d] Development of Recombinant Coronavirus vectors (Dept. of Virology, Faculty of Veterinary Medicine, UU); e] Anti-angiogenic drugs (Dept. of Medical Oncology, UMCU); f] Intervention in arthritis via specific drug targeting (Inst. of Infectious Diseases and Immunology, Faculty of Veterinary Medicine, UU). Keywords: In vivo imaging, gene therapy, tissue engineering, drug development

Onderwerpen

Kenmerken

Projectnummer:
91103010
Looptijd: 100%
Looptijd: 100 %
2003
2007
Onderdeel van programma:
Projectleider en penvoerder:
Dr. A.C.M. Martens
Verantwoordelijke organisatie:
Universitair Medisch Centrum Utrecht